elisa运用了免疫学原理和化学反应显色原理,需要将抗原或抗体预包被在固相载体表面,使后来形成的抗原-抗体-酶(荧光基团)-底物复合物黏附在载体上,通过检测od值或发光值,来检测靶蛋白的含量。elisa适合用于定量检测胞外的分泌性蛋白,检测大分子抗原和特异性抗体等。那么elisa实验结果异常的因素有哪些呢?让我们一起来看看吧!
一、样品
样品是检测的前提,样品质量会直接影响实验结果。可以用elisa来检测的样品很多,根据检测项目不同可以是血清、血浆、唾液、尿液等,但大部分还是以血清为样品。作为血清样品,应避免溶血,溶血可能会增加非特异性显色,导致结果出现误差。
血清样品的反复冻融会使血清中的抗体效价下降,所以需要多次检测的血清样品,如在5d内检测完,可4℃保存,如需长时间检测,可进行分装冻存。样品如被细菌污染腐败,可能会导致假阳性。
二、温度
温度主要影响抗原抗体反应,酶促反应速度及非特异性吸附,温度升高可使抗原抗体结合反应加速,但也易引起抗原抗体复合物的解离。酶促反应速度同样随温度升高而增快,但是酶蛋白变性也加快,丧失酶学活性,降低酶的有效浓度而减慢反应速度,温度低时以前者为主,高时以后者为主。
温度是质量控制的一个重要方面,一般允许±1℃的误差。最好水浴,微孔板浮在水面,使温度迅速平衡。如放温箱内温育,微孔板不应叠置,为避免蒸发,板上应加盖,盛放微孔板的湿盒应是金属的,传热容易。空湿盒应预先放在温箱中,以平衡温度,在室温较低时更需要。
三、时间
在温度保证的前提下,时间的控制至关重要,尤其是底物显色的时间控制,显色时间不足或过长会导致实验不成立,无法对检测结果进行判断。
加人标本、试剂及混合的时间称为操作时差。操作时差在每个试验中都存在,对结果或多或少有影响。对手工操作,尤其是样品量大的项目,从加人第一个标本到最后一个标本,需几十分钟,加人试剂及混匀存在很大的时间差异,使抗原抗体和酶促反应时间不一致,易产生假阳性、假阴性结果。
因此,样品过多时,请选择分批操作,对勿须更换移液口吸嘴的酶结合物,底物的加样可选择8联或12联专用的多道加液器。亦可避免单孔滴加底物时遗漏多加。
四、设备
仪器设备是elisa实验的基础,常用的相关仪器设备包括移液器、酶标仪、洗板机和恒温箱等。所有设备都需要进行检验校准,保证准确性和精确度。
移液器的使用要尽可能选择所需加液量接近最大量程,并正确使用,减少实验误差。
酶标仪要提前开机预热,保证光源稳定;洗板机要检查加液孔是否通畅,保证加液量。
恒温箱要提前开机,开、关门要快速,保证反应温度。
五、显色
显色是elisa中的最后一步反应,此时酶催化无色的底物生成有色的产物。反应的温度和时间仍是影响显色的因素。在一定时间内,阴性孔可保持无色,而阳性孔则随时间的延长而呈色加强。适当提高温度有助于加速显色进行。
在定量测定中,加入底物后的反应温度和时间应按规定力求准确。定性测定的显色可在室温进行,时间一般不需要严格控制,有时可根据阳性对照孔和阴性对照孔的显色情况适当缩短或延。
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