细胞衰老检测方法全过程

细胞衰老是一种不可逆的细胞周期停滞的状态,伴随着细胞形态、功能和分泌物的改变。下面详述
细胞衰老检测方法与步骤:
1、细胞接种前在6孔培养板中预先放置灭菌的细胞片,每孔加入1×10e5个细胞,37℃ 5% co2条件下培养过夜,使细胞在细胞片上生长。
2、在超净工作台中吸弃6孔培养板中的培养液,加入×1 pbs,洗涤细胞1次,随后加入2%甲醛/0.2%戊二醛固定液,室温条件下固定3~5分钟。
3、吸弃2%甲醛/0.2%戊二醛固定液,加入×1 pbs,洗涤细胞3次,每次3分钟。
4、吸弃×1 pbs,加x-gal溶液以浸没细胞片为宜,37℃孵育4~8小时或过夜,用保鲜膜包被6孔培养板以防染液蒸发。
5、取出细胞爬片,去离子水冲洗2次,再次用固定液固定4分钟,流水轻轻冲洗。
6、将细胞爬片按此顺序脱水、透明∶95%酒精i(2分钟)→95%酒精ⅱ(2分钟)→100%酒精i(2分钟)→100%酒精i(5分钟)→二甲苯i(2分钟)→二甲苯ⅱ(2分钟)。
7、中性树胶封片。
8、在普通光学显微镜下观察衰老细胞形态。
每张片子镜下计数400个细胞,确定x-gal染色阳性细胞(衰老细胞)在细胞群体中的所占的百分比即衰老细胞率(蓝染细胞数/总计细胞数×100%)。
关键词:超净工作台 普通光学显微镜

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