蛋白质和多肽反相HPLC分析和纯化指南十一
蛋白质组学
蛋白质组学是鉴定和定量细胞、组织或生物体蛋白质的科学，目的是了解生物学变化和疾病状态，开发疾病的生物标记和治疗药物的靶点。
如果将一个基础蛋白的各个修饰蛋白算作一个蛋白，那么哺乳动物细胞含多达3~4万个蛋白。当计算各个修饰后的蛋白时，蛋白质的数量远远超过了10万。
细胞内不同蛋白质的丰度或浓度可能因不同的数量级而变化。
细胞系统的任何变化，如老化、患病或接受药物治疗等均会导致一个或多个蛋白质相对丰度或表达发生变化。
蛋白质组学旨在鉴定细胞系统内的蛋白质，并识别和监测蛋白质的变化，如对蛋白质的修饰（翻译后修饰）或蛋白质相对浓度的变化。
如果某一事件使蛋白质丰度增加，那么我们就说该事件上调蛋白表达。如果某一事件使蛋白质丰度降低，那么我们就说该事件下调蛋白表达。
受细胞变化影响时，蛋白质丰度可能会发生显着变化，蛋白质丰度的变化是事件变化的信号。
翻译后修饰（ptm）是指蛋白质在翻译后的化学修饰。
ptm包括寡糖链的添加（糖基化）、醋酸盐等含烷基蛋白质n-端的修饰（乙酰化等）、*、*或*上磷酸基团的加入（磷酸化）等相似活动。
磷酸化等ptm活动在很大程度上是临时性的，用于细胞在细胞内和细胞间信息的传递。
糖基化等ptm活动为结构性改变，通常影响蛋白质折叠、与其他分子的相互作用以及与细胞壁的相互作用。
所有这些代表了活细胞内发生的动态变化。
蛋白质组表示细胞内或任何研究样品中全部的蛋白质。
一个完整的细胞蛋白质组由40000种单个蛋白质组成，具有多达10~20种不同的修饰形式，丰度也因数量级的不同而变化。
蛋白质组学的目标显然是巨大的，要求*大的分离和分析技术。
电泳a
为了实现蛋白质的鉴定和/或定量，必须尽可能地将单个蛋白质与其它蛋白质分离。
很多年来，凝胶电泳法均为分离完整蛋白质的初级手段。
双向凝胶电泳（2dge）根据蛋白质的等电点（向）和分子量（第二向）实现蛋白质的分离（见图48）。
完整细胞蛋白质组的2dge相当复杂，且在分离多达2000~3000个蛋白质的同时，很难实现蛋白质间的相互分离，或由于某些蛋白质丰度低而很难在凝胶上看到。2dge仍是强大的蛋白质分离工具，它是一项发展成熟的技术，具有许多经验丰富的用户，能够实现高分辨率和多种蛋白质的定量。
目前，2dge的局限性是其不仅耗时而且费力，主要衡量丰度更高的蛋白质，较难实现膜结合蛋白等重要蛋白质的衡量。
图48. 双向凝胶电泳可分离出多达2000~3000种单个蛋白质。
每一个斑点代表一个或多个蛋白质。
横向分离由等电点引起，与电荷有关。
纵向分离由分子量大小引起（sdspage）。
分子量较小的蛋白质移到凝胶底部，而分子量较大的蛋白质留在凝胶顶部。
色谱分析
色谱技术已发展成一种强大的分离技术，能够分离大量蛋白质和多肽。
但任何一种单独的色谱技术仍然只能分离出一小段蛋白质。
因此，多种色谱技术的结合使用已成为蛋白质组分析中蛋白质分离的一种普遍方法。
二维色谱
在*的蛋白质纯化模式的基础上，john yates和同事开发了一种名为多维蛋白质鉴定技术（mudpit）的蛋白质组分析技术。
在该技术中，采用*等蛋白水解酶首先将蛋白质组中的蛋白质水解成分子量相对较小的多肽。
随后利用离子交换色谱法通过逐步增加盐浓度将这些肽分离。
每一步，略提高盐浓度，将结合能力较弱的肽洗脱至反相磁珠。流动相为乙腈梯度洗脱液，借助疏水性洗脱多肽。
mudpit 法中，依次将离子交换磁珠和反相磁珠装入毛细管柱，从反相部分流出的洗脱液直接进入电喷雾质谱仪（图49）。
这一过程重复多次，能够实现蛋白质组水解产物肽的重要分离（图50）。
二维色谱法分离蛋白酶水解产物多肽的优点是将蛋白质分解成肽,允许凝胶电泳法无法实现的蛋白质分离和鉴定，例如一些疏水性膜结合蛋白和低丰度蛋白。
缺点是有关ptm的信息通常在mudpit法中丢失。
此外，形成肽的数量要远远多于蛋白质，平均每个蛋白质水解得到20~50个肽，且必须分离。
图49. 多维蛋白质鉴定技术（mudpit）包括通过离子交换色谱法实现的整个蛋白质组蛋白酶水解产物的初步分离以及对离子交换分离出片段中多肽的反相分离。
将离子交换磁珠和反相磁珠装入毛细管柱，从反相部分流出的洗脱液直接进入电喷雾质谱仪。
图50. 在多维蛋白质鉴定技术（mudpit）中，盐浓度的逐步增加会使多肽洗脱至柱的反相部分，且乙腈梯度洗脱液会根据疏水性分离多肽。
ptm信息通常在 mudpit 法中丢失。
此外，形成肽的数量要远远多于蛋白质，平均每个蛋白质水解得到20~50个肽，且必须分离。
较*的做法是使用亲和色谱法，固定金属亲和层析和*亲和层析，以在离子交换分离前或后期进一步分离多肽的亚片段。
蛋白质鉴定
用凝胶电泳法分离的蛋白质通常用蛋白酶水解（多数情况下为*），通过 maldi 质谱分析得到的多肽，并借助蛋白数据库鉴定。
通过mudpit和相关方法分离的肽进入电喷雾质谱仪，并借助蛋白质数据库通过质谱法和串级质谱法鉴定。
当鉴定出某种蛋白质的几种肽时，可相应鉴定出该种蛋白质。
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蛋白质组学是鉴定和定量细胞、组织或生物体蛋白质的科学，目的是了解生物学变化和疾病状态，开发疾病的生物标记和治疗药物的靶点。
如果将一个基础蛋白的各个修饰蛋白算作一个蛋白，那么哺乳动物细胞含多达3~4万个蛋白。当计算各个修饰后的蛋白时，蛋白质的数量远远超过了10万。
细胞内不同蛋白质的丰度或浓度可能因不同的数量级而变化。
细胞系统的任何变化，如老化、患病或接受药物治疗等均会导致一个或多个蛋白质相对丰度或表达发生变化。
蛋白质组学旨在鉴定细胞系统内的蛋白质，并识别和监测蛋白质的变化，如对蛋白质的修饰（翻译后修饰）或蛋白质相对浓度的变化。
如果某一事件使蛋白质丰度增加，那么我们就说该事件上调蛋白表达。如果某一事件使蛋白质丰度降低，那么我们就说该事件下调蛋白表达。
受细胞变化影响时，蛋白质丰度可能会发生显着变化，蛋白质丰度的变化是事件变化的信号。
翻译后修饰（ptm）是指蛋白质在翻译后的化学修饰。
ptm包括寡糖链的添加（糖基化）、醋酸盐等含烷基蛋白质n-端的修饰（乙酰化等）、*、*或*上磷酸基团的加入（磷酸化）等相似活动。
磷酸化等ptm活动在很大程度上是临时性的，用于细胞在细胞内和细胞间信息的传递。
糖基化等ptm活动为结构性改变，通常影响蛋白质折叠、与其他分子的相互作用以及与细胞壁的相互作用。
所有这些代表了活细胞内发生的动态变化。
蛋白质组表示细胞内或任何研究样品中全部的蛋白质。
一个完整的细胞蛋白质组由40000种单个蛋白质组成，具有多达10~20种不同的修饰形式，丰度也因数量级的不同而变化。
蛋白质组学的目标显然是巨大的，要求*大的分离和分析技术。
电泳a
为了实现蛋白质的鉴定和/或定量，必须尽可能地将单个蛋白质与其它蛋白质分离。
很多年来，凝胶电泳法均为分离完整蛋白质的初级手段。
双向凝胶电泳（2dge）根据蛋白质的等电点（向）和分子量（第二向）实现蛋白质的分离（见图48）。
完整细胞蛋白质组的2dge相当复杂，且在分离多达2000~3000个蛋白质的同时，很难实现蛋白质间的相互分离，或由于某些蛋白质丰度低而很难在凝胶上看到。2dge仍是强大的蛋白质分离工具，它是一项发展成熟的技术，具有许多经验丰富的用户，能够实现高分辨率和多种蛋白质的定量。
目前，2dge的局限性是其不仅耗时而且费力，主要衡量丰度更高的蛋白质，较难实现膜结合蛋白等重要蛋白质的衡量。
图48. 双向凝胶电泳可分离出多达2000~3000种单个蛋白质。
每一个斑点代表一个或多个蛋白质。
横向分离由等电点引起，与电荷有关。
纵向分离由分子量大小引起（sdspage）。
分子量较小的蛋白质移到凝胶底部，而分子量较大的蛋白质留在凝胶顶部。
色谱分析
色谱技术已发展成一种强大的分离技术，能够分离大量蛋白质和多肽。
但任何一种单独的色谱技术仍然只能分离出一小段蛋白质。
因此，多种色谱技术的结合使用已成为蛋白质组分析中蛋白质分离的一种普遍方法。
二维色谱
在*的蛋白质纯化模式的基础上，john yates和同事开发了一种名为多维蛋白质鉴定技术（mudpit）的蛋白质组分析技术。
在该技术中，采用*等蛋白水解酶首先将蛋白质组中的蛋白质水解成分子量相对较小的多肽。
随后利用离子交换色谱法通过逐步增加盐浓度将这些肽分离。
每一步，略提高盐浓度，将结合能力较弱的肽洗脱至反相磁珠。流动相为乙腈梯度洗脱液，借助疏水性洗脱多肽。
mudpit 法中，依次将离子交换磁珠和反相磁珠装入毛细管柱，从反相部分流出的洗脱液直接进入电喷雾质谱仪（图49）。
这一过程重复多次，能够实现蛋白质组水解产物肽的重要分离（图50）。
二维色谱法分离蛋白酶水解产物多肽的优点是将蛋白质分解成肽,允许凝胶电泳法无法实现的蛋白质分离和鉴定，例如一些疏水性膜结合蛋白和低丰度蛋白。
缺点是有关ptm的信息通常在mudpit法中丢失。
此外，形成肽的数量要远远多于蛋白质，平均每个蛋白质水解得到20~50个肽，且必须分离。
图49. 多维蛋白质鉴定技术（mudpit）包括通过离子交换色谱法实现的整个蛋白质组蛋白酶水解产物的初步分离以及对离子交换分离出片段中多肽的反相分离。
将离子交换磁珠和反相磁珠装入毛细管柱，从反相部分流出的洗脱液直接进入电喷雾质谱仪。
图50. 在多维蛋白质鉴定技术（mudpit）中，盐浓度的逐步增加会使多肽洗脱至柱的反相部分，且乙腈梯度洗脱液会根据疏水性分离多肽。
ptm信息通常在 mudpit 法中丢失。
此外，形成肽的数量要远远多于蛋白质，平均每个蛋白质水解得到20~50个肽，且必须分离。
较*的做法是使用亲和色谱法，固定金属亲和层析和*亲和层析，以在离子交换分离前或后期进一步分离多肽的亚片段。
蛋白质鉴定
用凝胶电泳法分离的蛋白质通常用蛋白酶水解（多数情况下为*），通过 maldi 质谱分析得到的多肽，并借助蛋白数据库鉴定。
通过mudpit和相关方法分离的肽进入电喷雾质谱仪，并借助蛋白质数据库通过质谱法和串级质谱法鉴定。
当鉴定出某种蛋白质的几种肽时，可相应鉴定出该种蛋白质。
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