猪细小病毒(PPV)检测试剂盒酶联法

猪细小病毒(ppv)检测试剂盒酶联法
本试剂盒仅供研究使用。 96t
使 用 目 的 :
本试剂盒用于测定血清,血浆及相关液体中细小病毒(ppv)表达。
实 验 原 理 :
本试剂盒采用双抗体夹心酶联免疫法(elisa)测定标本中猪细小病毒(ppv) 。用纯
化的猪细小病毒(ppv)抗体包被微孔板,制成固相抗体,可与样品中细小病毒(ppv)抗
原相结合,经洗涤除去未结合的抗体和其他成分后再与 hrp 标记的细小病毒(ppv)抗体
结合,形成抗体-抗原-酶标抗体复合物,经过*洗涤后加底物 tmb 显色。tmb 在 hrp
酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成zui终的黄色。用酶标仪在 450nm 波长下测
定吸光度(od 值) ,与 cutoff 值相比较,从而判定标本中猪细小病毒(ppv)的存在与
否。
猪细小病毒(ppv)检测试剂盒酶联法试 剂 盒 组 成 :
1 30 倍浓缩洗涤液 20ml×1 瓶 7 终止液 6ml×1 瓶
2 酶标试剂 6ml×1/瓶 8 阳性对照 0.5ml×1 瓶
3 酶标包被板 12 孔×8 条 9 阴性对照 0.5ml×1 瓶
4 样品稀释液 6ml×1 瓶 10 说明书 1 份
5 显色剂 a 液 6ml×1 瓶 11 封板膜 2 张
6 显色剂 b 液 6ml×1 瓶 12 密封袋 1 个
猪细小病毒(ppv)检测试剂盒酶联法标 本 要 求 :
1.标本处理:血清、血浆标本可直接检测
2.标本按要求制备后尽早进行实验。如不能及时检测,可将标本在-20℃保存一个月,
但应避免反复冻融。
3.不能检测含 nan3 的样品,因 nan3 抑制辣根过氧化物酶的(hrp)活性。
猪细小病毒(ppv)检测试剂盒酶联法操 作 步 骤 :
1. 编号:将样品对应微孔按序编号,每板应设阴性对照 2 孔、阳性对照 2 孔、空白对照 1
孔(空白对照孔不加样品及酶标试剂,其余各步操作相同)
2. 加样:分别在阴、阳性对照孔中加入阴性对照、阳性对照(标准品)50µl。然后在待测
样品孔先加样品稀释液 40µl,然后再加待测样品 10µl。加样将样品加于酶标板孔底部,
尽量不触及孔壁,轻轻晃动混匀,
3. 温育:用封板膜封板后置 37℃温育 30 分钟。
4. 配液:将 30 倍浓缩洗涤液用蒸馏水 30 倍稀释后备用
5. 洗涤:小心揭掉封板膜,弃去液体,甩干,每孔加满洗涤液,静置 30 秒后弃去,如此
重复 5 次,拍干。
6. 加酶:每孔加入酶标试剂 50µl,空白孔除外。
7. 温育:操作同 3。
8. 洗涤:操作同 5。
9. 显色:每孔先加入显色剂 a 50µl,再加入显色剂 b 50µl,轻轻震荡混匀,37℃避光显色
15 分钟
10. 终止:每孔加终止液 50µl,终止反应(此时蓝色立转黄色) 。
11. 测定:以空白空调零,450nm 波长依序测量各孔的吸光度(od 值) 。 测定应在加终止
液后 15 分钟以内进行。
猪细小病毒(ppv)检测试剂盒酶联法结 果 判 定 :
试验有效性:阳性对照孔平均值≥1.00; 阴性对照平均值≤0.15
临界值(cut off)计算:临界值=阴性对照孔平均值+0.15
阴性判定:样品 od 值< 临界值(cut off)者为细小病毒(ppv)阴性
阳性判定:样品 od 值≥ 临界值(cut off)者为细小病毒(ppv)阳性
注 意 事 项
1.操作严格按照说明书进行,本试剂不同批号组分不得混用。
2.试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡 15-30 分钟后方可使用,酶标包被板开封后如未
用完,板条应装入密封袋中保存。
3.浓洗涤液可能会有结晶析出,稀释时可在水浴中加温助溶,洗涤时不影响结果。
4. 封板膜只限一次性使用,以避免交叉污染。
5.底物请避光保存。
6.试验结果判定必须以酶标仪读数为准,使用双波长检测时,参考波长为 630nm
7.所有样品,洗涤液和各种废弃物都应按传染物处理。终止液为 2m 的硫酸,使用时必须
注意安全。
保 存 条 件 及 有 效 期
1.试剂盒保存: ;2-8℃。
2.有效期:6 个月

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