细胞免疫荧光主要应用于细胞内抗原抗体检测,适用于细胞水平实验。那么细胞免疫荧光有哪些方法和步骤呢?让我们一起来看看吧!
一、直接法
将标记的特异性荧光抗体,直接加在抗原标本上,经一定的温度和时间的染色,用水洗去未参加反应的多余荧光抗体,室温下干燥后封片、镜检。
二、间接法(较为常用)
如检查未知抗原,先用已知未标记的特异抗体(第一抗体)与抗原标本进行反应,用水洗去未反应的抗体,再用标记的抗抗体(第二抗体)与抗原标本反应,使之形成抗体—抗原—抗体复合物,再用水洗去未反应的标记抗体,干燥、封片后镜检。如果检查未知抗体,则表明抗原标本是已知的,待检血清为第一抗体,其它步骤的抗原检查相同。
三、操作步骤
1.倒出培养液。
2.润洗,将1ml sdwan全培养基沿培养板缓慢打入,盖上盖子,轻柔摇晃,先使用1ml的枪沿侧壁吸出润洗后,再使用200ul的枪沿壁吸出残液。
3.吹打,加入2ml sdwan全培养基,打在培养板底部,然后反复抽打,直至培养板底部由磨玻璃样变为透明。(吹打之后放置,后使用之前都要反复吹打)
4.将细胞爬片放入24孔板,每孔一个(注意每个孔只放一个,不要多放,注意检查)。
5.往(3)中吹打后的细胞液中继续加4ml的sdwan全培养基(即总计6ml)。将细胞液分装到24孔板中(分装之前吹打,防止细胞沉降而造成的不均匀),每个板500ul。注意事项:每一步打开细胞培养时,防止细胞培养板盖时勿使细胞培养板盖朝上放置。
6.在将细胞培养板放于培养箱之前,请喷酒精。
7.细胞培养24小时之内使用,最好20小时。沿侧壁吸出培养液。1pbs润洗2次,沿侧壁打入1ml或500ul pbs,轻柔摇匀2-3次后,沿侧壁吸出。
8.pfu number/细胞数=pfuv/细胞数=感染复数 感染复数为2,加病毒20ul + 480ul sd培养液 感染复数为15,加病毒150ul + 480ul sd培养液 病毒滴数经提前测定为1*10-7pfu/ml
9.先加sd培养基再加病毒。(24h或48h之后进行(10))
10固定细胞:吸出上清,加4%pfa(组织固定液),1ml/孔,室温下30min。
11.pbs洗2次,5min/次,1ml/孔。
12.细胞破膜:0.1% triton in pbs(pbst,t为triton) ,pbs:triton=1l:1ml或100ml:0.1ml。1ml/孔,室温1h。
13.封闭:5% bsa in pbst(t:0.5%tween)=bsa + pbst (100ml pbst 中添加5g bsa ) pbst=pbs+tween(1l pbs中添加500ultween) bsa 为牛血清白蛋白。1ml/孔,室温下2h。
14.一抗:用封闭液按1:100(比例依照抗体说明书)稀释,300ul/孔,4摄氏度过夜。
15.pbst(tween)洗3次,10min/次 。
16.二抗(4℃抗体荧光抗体):用pbst(tween)按1:1000稀释,300ul/孔,室温避光1h。
17.pbst(tween)洗3次,1ml/孔,10min/次。(18) dpai ,300ul/孔,室温避光10分钟。
18.pbs 洗2次,1ml/孔,立马抽出。
19.载玻片上滴加封片液,细胞爬片的细胞层与封片液接触。
20.荧光共聚焦显微镜观察。
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