常用的免疫酶染色方法

分为以下两种方法:
(一)酶标抗体法 *直接法 *间接法
(二)非标记抗体酶法 *酶桥法 *pap法
(一)酶标抗体法
*通过共价键将酶结合在抗体上,制成酶标抗体,与标本进行反应后,再用酶组化法将酶显色,使之生成有色的不溶性产物或具有一定电子密度的颗粒,以供光镜和电镜观察。 -优点:切片能*保存、反复观察,适于镜下半定量分析。
-缺点:酶与抗体形成的共价键,可损害抗体和酶的活性;易产生非特异染色。
(1) 酶标抗体法——直接法
将酶直接标记在一抗上,然后直接与相应抗原特异地结合。形成抗原-抗体-酶复合物,zui后用底物显色剂显色。
(2) 酶标抗体法——间接法
*将酶标记在二抗上,先将一抗与相应的抗原结合,形成抗原抗体复合物,再用二抗(酶标抗体)与复合物中的特异抗体结合,形成抗原-抗体-酶标抗体复合物,zui后用底物显色剂显色。 (a) 酶标抗体间接法的操作步骤 *标本准备: -石蜡脱蜡至水;
-冰冻切片浸入4°c丙酮固定10min,0.01m pbst漂洗,5min×3;
-细胞爬片先用pbs洗,然后4°c丙酮固定10min,再0.01m pbst漂洗,5min×3; *石蜡切片需要进行抗原修复,其它标本则不用;
*封闭内源性过氧化物酶:3%h2o2-甲醇溶液室温孵育5~10min (湿盒内) ; *0.01m pbst漂洗,5min×3;
*5~10%正常山羊血清(0.01m pbs稀释)封闭,室温孵育30min (湿盒内) ;
*倾去血清勿洗,加1%bsa(pbst配制)稀释的一抗, 37°c孵育60min 或4°c过夜(湿盒内);
*0.01m pbst 漂洗,5min×3;
*加hrp 标记的二抗室温孵育lh或37°c 30min ; *加0.01%h2o2~0.05%dab显色 (显色液应新鲜配置);
*经pbs漂洗3次后,梯度酒精脱水,二甲苯透明,明胶甘油封片,显微镜观察。
(二)非标记抗体酶法
酶桥法
*首先用酶免疫动物,制备效价高、特异性强的抗酶抗体; *以二抗作桥,将抗酶抗体联结在一抗上;
*再将酶结合在抗酶抗体上,经显色显示抗原的分布
-优点:任何抗体均未被酶标记。酶是通过免疫学原理与酶抗体结合的。避免了共价连接对抗体和酶活性的损害,提高了方法的敏感性,而且节省一抗的用量。但抗酶抗体不易纯化。
几点说明
*一抗(假设来自种属a)的稀释度可大些,使抗体的两个fab段均与组织抗原结合。
*二抗——桥抗体(抗种属a的igg抗体)应过量,使其fab段一个与一抗结合,另一个则游离。
*因抗酶抗体与一抗均系种属a igg,具有相同的抗原性,所以桥抗体游离的fab能与抗酶抗体结合,起桥作用,将其连接在与组织抗原结合的一抗上。
pap法
* 与酶桥法相似,不同的是,pap 法将酶桥法的第 3、4 步并为1步,用pap复合物代替。 *pap是离体制备的复合物( hrp--抗 hrp)。
*显色与酶桥法相同,pap复合物中的过氧化物酶催化底物水解,形成不溶性终产物。 pap法评价
*pap法比直接法、间接法、酶桥法更敏感。特别适用于石蜡切片中微量抗原和抗原性减弱抗原的检测。
-缺点:步骤较多,时间较长,不适用于临床常规检查。 *由于常做石蜡切片,故可用于回顾性研究。
亲和组织化学法
*是以一种物质对某种组织成分具有高度亲合力为基础。
*这种方法敏感性更高,有利于微量抗原(抗体)在细胞或亚细胞水平的定位。

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