食物中*(维生素H)的测定方法

微生物测定法
1.原理
*对于lactobacillus plantarum(atcc8014)的正常生长是一种必需的营养素,在一定生长条件下,lactobacillusplantarum的生长与繁殖速度与溶液中*的含量成一定的线性关系,通过利用浊度法或光密度法测定**生长和繁殖的强度可间接地测定出食物样品中的*含量。*低检出限为0.003ng。
2.适用范围
本方法参考official methods of analysis of the association of officialanalytical chemists、methods of vitamin analysis以及methods of themicrobiological analysis of selectednutrients。本方法适用于测定各类食物及饲料中的*含量。
3.试剂
本试验所用水均为蒸馏水,所用试剂均需分析纯试剂。
3.1 甲苯。
3.2 1 mol/l硫酸溶液:在600ml水中加入55.6ml浓硫酸,稀释至1000ml。
3.3 3 mol/l硫酸溶液:在600ml水中加入166.7ml浓硫酸,稀释至1000ml。
3.4 10mol/l氢氧化钠溶液:溶200g氢氧化钠于水中,定容至500ml。
3.5 1:1(1+1)乙醇溶液:500ml无水乙醇与500ml水充分混匀。
3.6 酸解酪蛋白:称取50g不含维生素的酪蛋白于500ml烧杯中,加200ml 3mol/l盐酸,121℃高压水解6小时。将水解物转移至蒸发皿内,在沸水浴上蒸发至膏状。加200ml水使之溶解后再蒸发至膏状,如此反复3次,以去除盐酸。以溴酚蓝作外指示剂,用10mol/l氢氧化钠调节ph至3.5。加20g活性炭,振摇,过滤,如果滤液不呈淡黄色或无色,可用活性炭重复处理。滤液加水稀释至500ml,贮存于试剂瓶中,加少许甲苯于4℃冰箱中保存。
?酸解的目的是为了消除酪蛋白中的维生素,确保基本培养基中不含待测定的*,但有时酸水解不一定*,所以一定要选用不含维生素的酪蛋白粉(*好为sigma公司产品),这样可较好地确保酸解酪蛋白中不含*。
3.7 *、*溶液:称取4g l-*和1g l-*(或2gdl-*)于800ml水中,加热至70~80℃,逐滴加入1:5(1+5)盐酸,不断搅拌,直至*溶解为止。冷至室温,加水稀释至1000ml。加少许甲苯于4℃冰箱中保存。
3.8腺嘌呤、*、*溶液:称取硫酸腺嘌呤(纯度为98%)、盐酸*(生化试剂)以及*各0.1g于250ml烧杯中,加75ml水和2ml浓盐酸,然后加热使其*溶解,冷却,若有沉淀产生,加盐酸数滴,再加热,如此反复,直至冷却后无沉淀产生为止,以水稀释至100ml,贮存于试剂瓶中,加少许甲苯于冰箱中保存。
3.9维生素溶液:称取20mg核黄素,10mg盐酸硫胺素,10mg对氨基苯甲酸,40mg盐酸吡哆醇,用0.02mol/l乙酸溶液溶解并定容至1000ml。
3.10盐溶液:称取10g mgso4 7h2o、1g kcl、0.5g mnso4 4h2o,0.5g feso4 7h2o加23ml 85% h3po4,用水溶解并定容至500ml。
3.11*标准溶液溶液名称浓度配置方法标准储备溶液50μg / ml称取25mg无水*用(1+1)乙醇溶液定至500ml,于4℃冰箱中贮存。标准中间液ⅰ1μg / ml取5ml储备液用(1+1)乙醇溶液定容至250ml,于2-4℃冰箱中贮存。标准中间液ⅱ10 ng / ml取5ml中间液ⅰ用(1+1)乙醇溶液定容500ml,于2-4℃冰箱中贮存标准工作液1 ng / ml取5ml中间液ⅱ用去离子水定容至50ml,在2-4℃冰箱中贮存。
3.12基本培养基:将下列试剂混合于500ml烧杯中,加水至200ml,以溴*蓝作外指示剂,用10mol/l氢氧化钠液调节ph至6.8,用水稀释至250ml。
酸解酪蛋白 25ml
*、*溶液 25ml
腺嘌呤、*、*溶液 5ml
维生素溶液 5ml
盐溶液 5ml
* 5g
无水醋酸钠 5g
此培养基也可从difco公司购得,产品号为no.0419-15-8。
?由于国内的某些试番茄汁,10ml吐温-80,5.0~7.5g琼脂,加热溶解,用(2+3)氢氧化钠调节ph为6.5~6.8,然后定容至1000ml,分装于试管,于121℃高压**10分钟,取出后竖直试管,待冷却至室温后于冰箱2-4℃保存。
3.13生理盐水:称取9.0g氯化钠溶于1000ml水中,。每次使用时分别倒入2~4支10ml试管中,每支约加10ml,塞好棉塞,于121℃高压**10分钟,备用。
3.14 0.4g/l溴*蓝溶液:称取0.1g溴*蓝于小研钵内,加1.6ml 0.1mol/l氢氧化钠研磨,加少许水继续研磨,直至*溶解,用水稀释至250ml。
3.15 0.4g/l溴甲酚绿溶液:称取0.1g溴甲酚绿于小研钵中,加1.4ml 0.1mol/l氢氧化钠研磨,加少许水继续研磨,直至*溶解,用水稀释至250ml。
3.16 1g/l溴酚蓝乙醇溶液:称取0.1g溴酚蓝,用乙醇溶解后,加乙醇稀释至100ml。
3.17番茄汁:将新鲜番茄去皮、去籽后,制成匀浆,用纱布多次过滤,直至滤液呈淡黄色透明液体,滴加几滴甲苯于液体表面,放置冰箱中冷冻保存。
4.仪器与设备
(1) 实验室常用设备
(2) 电热恒温培养箱
(3) 压力蒸汽**器
(4) 液体快速混合器
(5) 离心机
(6) 分光光度计
(7) 硬质玻璃试管:20mm×150mm
5.菌种与培养液的制备与保存
5.1 储备菌种的制备:lactobacillus plantarum(atcc8014)接种于直面琼脂培养管中,在37±0.5℃恒温箱中培养16~24小时,取出后放入冰箱中保存,每隔一周至少传种一次。在实验前**必须传种一次。
5.2 种子培养液的制备:加2ml*标准应用液和3ml基本培养基于10ml离心管中,塞好棉塞,于121℃高压**10分钟,取出,冷却后于冰箱中保存。每次制备两管,备用。
? 加入离心管中的*标准液要适量,过少会影响lactobacillusplantarum的生长,过多会使零管中的光密度值增大,影响测定结果的准确性。一般2~3ml标准工作掖即可。
6.操作步骤
6.1 接种液的配制:使用前**,将已在琼脂管中生长16~24小时的l.plantarum接种于种子培养液中,在37±0.5℃培养16~24小时,取出后离心10分钟(3000rpm),弃去上清液,用已**的生理盐水淋洗2次,再加入3ml**生理盐水,混匀后,将此液倒入已**的注射器中,立即使用。
? 菌种的淋洗一定要*,否则部分残留在**表面的*会使空白管的光密度值升高,影响结果的准确性。
6.2样品制备:称取适量样品,放入100ml三角瓶中,加50ml1mol/l硫酸(水解动物样品用3mol/l硫酸,水解植物样品及混合型样品用1mol/l硫酸),混匀后于121℃高压水解90分钟,取出冷却至室温。以溴甲酚绿为外指示剂,用10mol/l氢氧化钠溶液调节ph为4.5,将水解液移至100ml容量瓶中,定容,过滤。样品水解液只能在4℃冰箱保存2~3天。取适量水解液于25ml具塞刻度试管中,以溴*蓝为外指示剂,用0.1mol/l氢氧化钠调节至ph为6.8,用水稀释至刻度。
6.3 样品试管的制备:于平行样品管中分别加入1.0、2.0、3.0、4.0ml样品水解液,加水至5ml,然后再加入5ml基本液体培养基。
6.4 标准系列管的制备:每组试管中分别加入*标准工作液0.0、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0ml,(相当于0.0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0ng)加水至5ml,再加入5ml基本液体培养基,需做三组标准曲线。
6.5 **:样品管与标准系列管均用棉塞塞好,于121℃条件下高压**10分钟
? **时间不宜过长,否则会破坏基本培养基中的营养成分,影响lactobacillusplantarum的生长,*好在5-10分钟内。
6.6 接种与培养:待试管冷至室温后,每管接种一滴种子液,于37±0.5℃恒温箱中培养16~20小时。
?(1)接种前,接种室要在紫外灯下**至少30分钟。(2)在接种时,其中一支标准系列0管可不接种,这样可观察此次实验是否存在污染,并且可消除由于管中液体的颜色造成的误差。
6.7 测定:分光光度计,波长550nm条件下,以标准系列0管调零测定样品管及标准管的光密度值。
?首先以未接种的标准系列0管进行仪器调零,然后在用接种后的标准系列0管进行二次调零,之后再测定其他管中液体的光密度值。两次调零的目的在于*消除液体本身的颜色及污染对实验结果的影响.
7.计算
以*标准系列的不同纳克数为横坐标,光密度值为纵坐标,绘制标准曲线。在曲线上查出相对应的样品测定管中的*含量,然后再按以下公式计算样品中*含量:
c·v·f
x= ---------------- ×100
m×1000
式中 x──样品中*含量,μg/100g:
c──测定管中的*含量,ng:
v──样品水解液的定容体积,ml:
f──样品液的稀释倍数
m──样品质量,g。
100/1000 ── 单位换算系数
8.注意事项
在实验过程中,一定要注意避免油脂的污染,因为当有油脂存在时,会刺激lactobacillus plantarum(atcc8014)快速生长,导致其生长速度不再与*的含量呈线性关系。因此在实验前,要检查所用玻璃器皿的表面是否已*清洗,操作者的双手不要涂摸各种护手霜,以防此类油脂进入被测液体中。
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